Activité antimicrobienne de Lacticaseibacillus rhamnosus CRL 2244 et son impact sur les réponses phénotypiques et transcriptionnelles chez Acinetobacter baumannii résistant aux carbapénèmes

Blog

MaisonMaison / Blog / Activité antimicrobienne de Lacticaseibacillus rhamnosus CRL 2244 et son impact sur les réponses phénotypiques et transcriptionnelles chez Acinetobacter baumannii résistant aux carbapénèmes

Jun 16, 2024

Activité antimicrobienne de Lacticaseibacillus rhamnosus CRL 2244 et son impact sur les réponses phénotypiques et transcriptionnelles chez Acinetobacter baumannii résistant aux carbapénèmes

Scientific Reports volume 13, Numéro d'article : 14323 (2023) Citer cet article Détails des mesures Acinetobacter baumannii (CRAB) résistant aux carbapénèmes est un agent pathogène nosocomial reconnu avec des effets limités.

Rapports scientifiques volume 13, Numéro d'article : 14323 (2023) Citer cet article

Détails des métriques

Acinetobacter baumannii (CRAB) résistant aux carbapénèmes est un pathogène nosocomial reconnu avec des options de traitement antibiotique limitées. Les bactéries lactiques (LAB) constituent une alternative thérapeutique prometteuse. Ici, nous avons étudié les propriétés antibactériennes d'une collection de souches LAB en utilisant une analyse phénotypique et transcriptomique contre les souches cliniques d'A. baumannii. Une souche, Lacticaseibacillus rhamnosus CRL 2244, a démontré une puissante capacité inhibitrice sur A. baumannii avec une activité de destruction significative. Les images de microscopie électronique à balayage ont montré des changements dans la morphologie d'A. baumannii avec une formation accrue de vésicules de la membrane externe. Des changements significatifs dans les niveaux d’expression d’une grande variété de gènes ont également été observés. Il est intéressant de noter que la plupart des gènes modifiés étaient impliqués dans une voie métabolique connue pour être associée à la survie d'A. baumannii. L'opéron paa, le système Hut et la dégradation des acides gras font partie des voies induites. L’analyse révèle l’impact de la Lcb. rhamnosus CRL 2244 sur la réponse d'A. baumannii, entraînant un stress bactérien et la mort cellulaire ultérieure. Ces résultats mettent en évidence les propriétés antibactériennes du Lcb. rhamnosus CRL 2244 et son potentiel en tant que stratégie alternative ou complémentaire pour traiter les infections. Une exploration et un développement plus approfondis du LAB en tant qu'option de traitement pourraient fournir des alternatives précieuses pour lutter contre les infections par le CRAB.

Acinetobacter baumannii (CRAB) résistant aux carbapénèmes a gagné en notoriété ces dernières années en raison de son émergence nosocomiale rapide et de sa propagation mondiale. Le CRAB provoque de graves infections chez les patients vulnérables et est également connu pour coloniser le rectum des patients et des travailleurs associés aux unités de soins intensifs1,2,3. Les souches de CRAB en circulation possèdent une résistance extrême aux antibiotiques (XDR) et, dans certains cas, une résistance pandrogue (PDR)4, ce qui complique gravement le traitement avec les antibiotiques actuellement disponibles. Au cours de la dernière décennie, et malgré de nombreux efforts pour trouver des alternatives thérapeutiques, la production de nouveaux médicaments pour le traitement des infections causées par le CRAB a été rare.

Les bactéries lactiques (LAB) constituent une alternative thérapeutique prometteuse en raison de la capacité démontrée de certaines souches LAB à inhiber les agents pathogènes du groupe ESKAPE (Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa et Enterococcus faecalis)5,6,7. ,8,9. Les LAB sont des micro-organismes à Gram positif considérés comme sans danger pour l'inclusion dans les aliments (GRAS) et sont largement utilisés dans la production de divers aliments fermentés, où ils contribuent au goût et à la texture du produit final10,11. Les LAB sont largement répandues dans la nature et nombre d’entre elles font partie du microbiote intestinal des humains et des animaux. Des souches de différentes espèces LAB sont utilisées comme suppléments probiotiques pour leurs propriétés bénéfiques pour la santé humaine ou animale. Ces avantages vont de l’amélioration de la santé intestinale et de la réponse immunitaire12 à la prévention de la diarrhée aiguë et associée aux antibiotiques13 et de la gastrite chronique14,15, entre autres. L’effet antimicrobien des LAB contre les pathogènes constitue une propriété importante dans la sélection de probiotiques potentiels pour le maintien de l’équilibre microbien intestinal et comme substitut aux antibiotiques de synthèse16. Les probiotiques LAB sont antagonistes des agents pathogènes et inhibent la croissance de ces bactéries en (i) produisant des substances antimicrobiennes ou des composés bioactifs7,8,9,17 ; (ii) en occupant leurs niches et/ou en les déplaçant (y compris dans la prévention et/ou l'élimination des biofilms)5 ; (iii) en favorisant la maturation et l'intégrité intestinales et en augmentant l'effet barrière non immuno-dépendant ; ou en activant directement les cellules lymphoïdes, en partie médiées par le tissu lymphoïde associé à l'intestin (système GALT), et (iv) en modulant les réponses immunitaires locales et systémiques6,18,19.

 20 mm); however, inhibition of strain ABUH702 was weak (DHI < 10 mm) (Fig. 1B). The strain ATCC 53103, in the assayed conditions, did not show antimicrobial activity on any of the CRAB strains evaluated (data not shown)./p> 1. These DEGs represent 10.19% of the total genes in the AB5075 reference genome and encompass a wide range of functional categories. Among the DEGs, 223 were up-regulated and 163 were down-regulated. Notably, these DEGs include genes associated with various important functions, such as iron-uptake, antibiotic resistance, metabolism, cell wall synthesis, virulence, transcriptional regulators, efflux pumps, and motility, among others (Table S2)./p> 20 mm (Strong); 20–10 mm (intermediate); and < 10 mm (weak). The width of the clear zone or "R" value was also determined according to the formula R = Inhibition diameter—Spot diameter divided by two5; and will be interpreted "no inhibition capacity" when R < 2 mm, "low inhibition" with "R" values of 2–5 mm, and "high inhibition capacity" with "R" values > 6 mm56,57. AU/ml (arbitrary units per ml) was calculated as the IHD × 1000 divided by the μl seed5. The assays were performed in triplicate./p> 1 were considered statistically significant./p> 20 mm). Experiments were performed in triplicate./p>